№ 2 (187) 2024 р. С. 19–23

ОСОБЛИВОСТІ АНГІОГЕНЕЗУ МОЗКУ ЗА УМОВ ПЕНТИЛЕНЕТЕТРАЗОЛ (ПТЗ)-ІНДУКОВАНОГО КІНДЛІНГА ТА ТРАНСКРАНІАЛЬНОЇ СТИМУЛЯЦІЇ ПОСТІЙНИМ СТРУМОМ МОЗОЧКА

M. П. Первак, Н. І. Букреєва, О. А. Kaщенко, О. Д. Рябенька,
Л. С. Годлевський

Одеський національний медичний університет, Одеса, Україна

DOI 10.32782/2226-2008-2024-2-3

Метою дослідження було вивчення щільності мікросудин у щурів із  пентиленететразол (ПТЗ)-викликаним кіндлінгом у корі головного мозку та за умов застосування транскраніального подразнення постійним струмом. Встановлено, що ТППС катодом (ТППС, 500 μA, 15.0 хв) мозочка затримує розвиток генералізованих судом. Щільність мікросудин у щурів із кіндлінгом перевищувала таку у щурів групи контролю на 63,1% (P<0,05). У кіндлінгових щурів із ТППС подібні відмінності становили 25,7% (P<0,05) і одночасно були достовірно меншими (на 23,0%) ніж у кіндлінгових щурів із хибними ТППС (P<0,05). Отримані результати свідчать, що ТППС катодом мозочка попереджає формування кіндлінг-викликаних судом та ангіогенез у корі головного мозку, зменшує мітоз ендотеліальних клітин, а також продукцію колагену IV.

Ключові слова: хронічна епілептична активність, транскраніальне подразнення постійним струмом, мозочок, ангіогенез, колаген IV.

ЛІТЕРАТУРА

  1. Vezzani A. Brain inflammation and seizures: evolving concepts and new findings in the last 2 decades. Epilepsy Currents. 2020; 20(6): 40–43. doi: 10.1177/1535759720948900.
  2. Verkhratsky A., Butt A.M. Neuroglia: Function and Pathology. Academic Press (an imprint of Elsevier), Nikki P. Levy Publ., 2023; 347–398.
  3. Wagner N, Wagner KD. PPARs and angiogenesis-implications in pathology. Int J Mol Sci. 2020; 21(16): 5723. https://foi. org/10.3390/ijms21165723.
  4. van Lanen RHGJ, Melchers S, Hoogland G, et al. Microvascular changes associated with epilepsy: A narrative review. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2021;41(10): 2492–2509. doi: 10.1177/0271678X211010388.
  5. Straudi S, Antonioni A, Baroni A, et al. Anti-inflammatory and cortical responses after transcranial direct current stimulation in disorders of consciousness: an exploratory study. J Clin Med. 2024; 13: 108. https://doi.org/10.3390/jcm13010108.
  6. Wu X, Xu W, Zhang T, Bao W. Peripheral inflammatory markers in patients with prolonged disorder of consciousness after severe traumatic brain injury. Ann Palliat Med. 2021; 10: 9114–9121.
  7. Doganyigit Z, Okan A, Akyuz E, Poshyvak O, Pervak M, Yehorenko O, et al. On the role of tumor necrosis factor – α (TNF– α) and nuclear factor P-NF-κB in the pentylenetetrazole kindling pathogenesis. Odesa Medical Journal. 2022; 1–2(179–180): 15–20. (in Ukrainian). doi: 10.54229/2226-2008-2022-1-2-2.
  8. Godlevsky LS, Poshyvak OB, Pervak MP, Latypov KA, Pryboilovets KO, Yehorenko OS. Effects of a combination of transcranial DC cerebellar stimulation and pioglitazone administration on pentylenetetrazole-induced seizures in kindled rats. 2022; 53: 88–92. https://doi.org/10.1007/s11062-022-09919-7.
  9. Wareham LK, Baratta RO, Del Buono BJ, Schlumpf E, Calkins DJ. Collagen in the central nervous system: contributions to neurodegeneration and promise as a therapeutic target. Mol Neurodegeneration. 2024; 19: 11. https://doi.org/10.1186/ s13024-024-00704-0.
  10. Fujimoto K, Murakami-Hisaichi M, Tokuda C, Kajiya F. A silver impregnation method for study of cerebral microcirculation using confocal, light, and electron microscopy. Microvascular Research. 1996; 51(1): 116–120. https://doi.org/10.1006/ mvre.1996.0012.
  11. Fenstermacher JD, Lin S-Z, De Maro JA, et al. Quantification of small microvascular system morphology in five rat brain areas. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2005; 25(1): 208–208. https://doi.org/10.1038/sj.jcbfm.9591524.0208.
  12. Marien KM, Croons V, Waumans Y, et al. Development and validation of a histological method to measure microvessel density in whole-slide images of cancer tissue. PLoS One. 2016; 11(9): 0161496. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161496.
  13. Kotlinowski J., Jozkowicz A. PPAR-gamma and angiogenesis: endothelial cells perspective. Diabetes Research. 2016; 16: 8492353. https://doi.org/10.1155/2016/8492353.
  14. Guan Y, Liu J, Gu Y, Ji X. Effects of hypoxia on cerebral microvascular angiogenesis: benefits or damages? Aging Dis. 2023; 1; 14(2): 370–385. https://doi.org/10.14336/AD.2022.0902.
  15. Kresyun NV, Godlevskii LS. Superoxide dismutase and catalase activities in the retina during experimental diabetes and electric stimulation of the paleocerebellar cortex. Bull of Exp Biol Med. 2014; 58(2): 206–208. https://doi.org/10.1007/ s10517-014-2723-6.
  16. Pulgar VM. Direct electric stimulation to increase cerebrovascular function. Front Syst Neurosci. 2015; 9: 54. https://doi. org.10.3389/fnsys.2015.00054.
  17. Grigorios K., Bernard A, Bôle A, Khrestchatisky M, Ferhat L. In the rat hippocampus, pilocarpine-induced status epilepticus is associated with reactive glia and concomitant increased expression of CD31, PDGFRβ, and collagen IV in endothelial cells and pericytes of the blood–brain barrier. International Journal of Molecular Sciences. 2024; 25(3): 1693. https://doi. org.10.3390/ijms25031693.
Переглянути публікацію PDF