№ 6 (197) 2025 р. С. 40–45

ОСОБЛИВОСТІ МІКРОБІОМУ ВЕРХНЬОЩЕЛЕПНИХ ПАЗУХ ПРИ ГОСТРОМУ БАКТЕРІАЛЬНОМУ РИНОСИНУСИТІ

В. П. Полянська, Г. А. Лобань, М. І. Безега, С. В. Зачепило, І. М. Звягольська

Полтавський державний медичний університет, Полтава, Україна

DOI 10.32782/2226-2008-2025-6-5

Метою дослідження було вивчення видового складу та популяційного рівня мікробіому слизових оболонок верхньощелепних пазух з визначенням їхнього адгезивного потенціалу за умов гострого бактеріального риносинуситу. Обстежено 38 пацієнтів з діагнозом гострий бактеріальний риносинусит, від яких виділено 45 штамів мікроорганізмів. У структурі клінічно значимих ізолятів домінували S. aureus, H. influenzae, K. pneumoniae, M. catarrhalis. Також у розвитку захворювання доведена роль коменсальних бактерій S. epidermidis, S. warneri, K. rizophilia, для яких характерний високий популяційний рівень. У 78% пацієнтів виявлена моноінфекція, а у 22% – мікстінфекція. Клінічні штами, що колонізували верхньощелепні пазухи, у 81% володіли високою і у 19% середньою адгезивною активністю.

Зростання ролі опортуністичних мікроорганізмів у розвитку гострого бактеріального риносинуситу зумовлене їхньою вірулентністю та значним популяційним рівнем.

Ключові слова: гострий бактеріальний риносинусит, мікробіом, адгезія.

REFERENCES

  1. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, et al. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology. 2020;58(Suppl S29):1–464. doi: 10.4193/Rhin20.600.
  2. Loban’ G, Faustova M, Dobrovolska O, Tkachenko P. War in Ukraine: incursion of antimicrobial resistance. Ir J Med Sci. 2023;192(6):2905–2907. PMID: 37178279. PMCID: PMC10182337. doi: 10.1007/s11845-023-03401-x.
  3. Unified clinical protocol for primary and specialized medical care. Acute rhinosinusitis [Unifikovanyi klinichnyi protokol pervynnoi ta spetsializovanoi medychnoi dopomohy. Hostryi rynosynusyt]. 2023. (In Ukrainian). Available from: https://moz.gov.ua/uploads/10/50495-dn_1793_13102023_dod_1.pdf.
  4. Jaume F, Valls-Mateus M, Mullol J. Common Cold and Acute Rhinosinusitis: Up-to-Date Management in 2020. Curr Allergy Asthma Rep. 2020;20(7):28. doi: 10.1007/s11882-020-00917-5.
  5. Aring AM, Chan MM. Current Concepts in Adult Acute Rhinosinusitis. Am Fam Physician. 2016;94(2):97–105. PMID: 27419326.
  6. Patel ZM, Hwang PH. Acute Bacterial Rhinosinusitis. Infections of the Ears, Nose, Throat, and Sinuses. 2018 May 4:133–143. doi: 10.1007/978-3-319-74835-1_11.
  7. Khafagy Y, Moneir W, Salem MA, Ibrahim WM, Ebada HA. Increasing incidence of orbital complications of acute rhinosinusitis in the post COVID-19 era: A tertiary referral center experience. Eur J Rhinol Allergy. 2024;7(3):81–84. doi: 10.5152/ejra.2024150.
  8. Vrynchanu NO, Dudikova DM, Hrynchuk NI, Nedashkivska VV. Biofilms. The current status and prospects of antimicrobial therapy [Bioplivky. Suchasnyi stan i perspektyvy antymikrobnoi terapii]. Pharmacology and Drug Toxicology. 2019;13(5):311–321. doi: 10.33250.13.05.311 (in Ukrainian).
  9. Fedorchenko V, Polyanskaya V, Zachepilo S, Bobrova N, Loban G. Comprehensive study of anti-fungal effect of evgenol emulsion in polysorbat-80 on reference strain of candida albicans ATCC 885-653. Georgian Med News. 2018;9(282):166–170. (In Russian). PMID: 30358563.
  10. Dickson R, Erb-Downward J, Martinez F, Huffnagle G. The microbiome and the respiratory tract. HHS Public Access. 2017;78:481–504. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-021115-105238.
  11. Brook I. Microbiology of sinusitis. Proc Am Thorac Soc. 2011;8(1):90–100. doi: 10.1513/pats.201006-038RN.
  12. Bezega M, Zachepylo S, Polianska V, Podovzhnii O. Current views on the functional status of the palatine tonsils in chronic tonsillitis and alternatives in treatment strategies (literature review). Pol Otorhino Rev. 2023;12(1):26–34. doi: 10.5604/01.3001.0016.3166.
  13. Miah MS, Nix P, Koukkoullis A, Sandoe J. Microbial causes of complicated acute bacterial rhinosinusitis and implications for empirical antimicrobial therapy. J Laryngol Otol. 2016;130(2):169–175. doi: 10.1017/S0022215115003369.
  14. Sawada S, Matsubara S. Microbiology of Acute Maxillary Sinusitis in Children. Laryngoscope. 2021;131(10):E2705-E2711. doi: 10.1002/lary.29564.
  15. World Medical Association. World Medical Association Declaration of Helsinki: ethical principles for medical research involving human subjects. JAMA. 2013;310(20):2191–2194. doi: 10.1001/jama.2013.281053.
  16. Klymniuk SI, Savchuk MM, Andreichyn YuM, et al. Peculiarity of nose and nasopharynx microbiocenosis in people with influenza and acute respiratory viral infections [Osoblyvosti mikrobiotsenozu nosa ta nosohlotky u khvorykh na hryp ta HRVI]. Infektsiini khvoroby. 2014;3:38–42 (in Ukrainian).
  17. Jabeen I, Islam S, Hassan AKMI, Tasnim Z, Shuvo SR. A brief insight into Citrobacter species – a growing threat to public health. Front Antibiot. 2023;2:1276982. doi: 10.3389/frabi.2023.1276982.
  18. Ren J, Sun P, Wang M, Zhou W, Liu Z. Insights into the role of Streptococcus oralis as an opportunistic pathogen in infectious diseases. Front Cell Infect Microbiol. 2024;14:1480961. doi: 10.3389/fcimb.2024.1480961.
  19. Ananieva MM, Faustova MO, Basarab IO, Loban’ GA. Kocuria rosea, kocuria kristinae, leuconostoc mesenteroides as caries-causing representatives of oral microflora. Wiad Lek. 2017;70(2 pt 2):296–298. PMID: 29059646.
  20. Polianska VP, Bezeha MI, Zachepylo SV, Zviaholska IM. The effect of essential oils on the viability and adhesive properties of clinical strains of candida albicans and candida glabrata obtained from patients with pharyngomycosis. Klinichna ta profilaktychna medytsyna. 2024;(8):77–78. https://doi.org/10.31612/2616-4868.8.2024.09 (in Ukrainian).
Переглянути публікацію PDF